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Waters Japan

タンパク質に基づいた SEC メソッドでのピークテーリングおよび/または分離低下(ピークの広がり)の一般的な原因は何ですか? - WKB230675

Article number: 230675To English version

環境

  • サイズ排除クロマトグラフィー (SEC)
  • ピークテーリング
  • ACQUITY
  • 超高速高分離液体クロマトグラフィー (UPLC)
  • エチレン架橋型ハイブリッド (BEH)
  • MaxPeak Premier
  • カラム

回答

ピークテーリングおよび/または分離低下の一般的な原因には、以下が含まれています(ただし、これらに限定されません)。

  1. 微生物の汚染。
  2. サンプル流路内の Teflon (PTFE) の存在。
    • Teflon は非常に疎水性であるため、タンパク質が吸着し、テーリングの問題が発生することがあります。
    • Teflon フローセルを使用している場合は、ステンレススチール製またはチタン製のフローセルに交換して、この問題を解決します。
  3. システムの拡散(バンド拡散、バンドの広がり)が高すぎます。
    • インジェクターと検出器の間のシステム容量が多すぎると、ピークが広がり、テーリングが発生することがあります。
      • 古いフローセルと比較して、容量が大きい新しいフローセル。
      • 古いチューブと比較して、容量が大きい新しいチューブ。
    • 流路の接続が不十分な場合、テーリングなどのピーク形状の問題が発生することがあります。
      • フェラルの奥行きが正しくない(短すぎる)と、エンドフィッティング内にボイドが発生することがあります。
      • フェラルが滑りやすくなっています(チューブがエンドフィッティングの中で滑り、空洞が発生することがあります)。
  4. 非特異的吸着:
    • タンパク質は、ステンレススチールの正電荷へのイオン引力によってステンレススチール製表面に吸着し、テーリングを引き起こすことがあります。
    • タンパク質は、疎水性の吸引力によって SEC 粒子に吸着することがあります。
      • 生体分子を数回注入して、ステンレススチール(MaxPeak Premier 以外のハードウェア)と粒子の活性部位を飽和させ、不要な非特異的吸着を防ぎます。ACQUITY UPLC Protein BEH SEC カラムにコンディショニング注入を行う方法が説明されている、ACQUITY UPLC Protein Protein BEH SEC Columns and Standards Care and Use Manual(『ACQUITY UPLC タンパク質 BEH SEC カラムおよび標準試料の維持管理マニュアル』)の 3 ページを参照してください。
    • Waters は、ステンレススチールや粒子への非特異的吸着を防止するように設計された ACQUITY Premier Protein SEC 250A および XBridge Premier Protein SEC 250A カラムを提供するようになりました。
  5. カラムヘッドでの粒子の蓄積:
    • 微生物の増殖/汚染:
      • ピークテーリングが発生することがありますが、ピーク割れ、分離度の低下、高圧問題がより頻繁に発生します。
        • 低イオン強度の移動相(150 mM 未満)を 2 ~ 3 日ごとに交換します。
        • 高イオン強度の移動相(150 mM を超える)を 2 週間ごとに交換します。
    • 添加剤(ポリソルベート 80 など)およびその他のマトリックス成分:
      • 充塡剤に吸着し、分離を低下させることがあります。
  6. 疎水性二次相互作用:
    • ピークテーリングが発生する可能性があります。
      • 有機共溶媒は通常、疎水性二次相互作用を緩和するために、SEC 移動相で使用されます。有機モディファイヤーを使用する場合、イソプロパノール (IPA) がこれらのカラムの推奨溶媒です。
        • 移動相組成の 5% 以下の濃度から増加し始め、必要に応じてのみ、最大 15% まで増加します。
  7. カラムの冷蔵庫での保管:
    • カラム性能の低下につながる可能性があります。
      • ACQUITY UPLC Protein BEH SEC カラム、XBridge Protein BEH SEC カラム、ACQUITY Premier Protein SEC 250A カラム、および XBridge Premier Protein SEC 250A カラムなどの SEC カラムを、冷蔵庫で保管しないことを、Waters は推奨します。
        • これらのカラムは、10% アセトニトリル/90% 25 mM リン酸ナトリウム pH 7.0 + 100 mM KCl を封入して室温で保管してください。
  8. 最適ではないカラム保管溶媒:

追加情報

関連項目:

  1. サイズ排除およびイオン交換クロマトグラフィー分析に用いる UPLC の日常的な使用法とメンテナンス
    • このドキュメントでは、以下の例を示します。
      • Teflon フローセルがどのようにしてピークテーリングを引き起こす。
      • 微生物汚染がどのようにして SEC での効率を低下させる。
  2. Guide to Size-Exclusion Chromatography (SEC) of mAb Aggregates, Monomers, and Fragments(『サイズ排除クロマトグラフィー (SEC) 最適化ガイド』)
    • このドキュメントでは以下について説明します。
      • 頑健な LC ベースの SEC 分析法開発の重要性:
        • 適切な BEH SEC カラムの選択。
        • 分析法開発。
      • SEC 分離成分のテーリングおよび/または分離低下の場合の考慮事項:
        • ACQUITY UPLC Protein BEH SEC カラムを LC システムに接続する。
        • UPLC SEC 分離に対する LC システム拡散の影響。
        • LC システム拡散容量の確認。
      • Protein BEH SEC カラム寿命の最大化
        • 移動相の調製と使用。
        • 溶媒送液システムの細菌汚染防止。
        • ACQUITY UPLC システムを洗浄する。
        • Protein BEH SEC カラムのサンプル由来の微粒子による汚染を最小にする。
        • サンプル製剤成分によるタンパク質 BEH SEC カラムの汚染防止。
        • カラムの保管。
  3. Evaluating the Impact of LC System Dispersion on the Size-Exclusion Chromatography Analysis of Proteins(タンパク質のサイズ排除クロマトグラフィー分析における LC システム拡散の影響の評価)
    • このドキュメントでは以下について説明します。
      • LC システム拡散の測定についての理解。
      • SEC に基づいたタンパク質分離における LC システム拡散の影響のトレーニング用および系統的なデモ。
      • 以下に基づいた最適な SEC カラム設定を選択するためのガイダンス:
        1. 使用する LC システム。
        2. 分析メソッドの要件には以下が含まれます。
          • 分離
          • 感度
          • 再現性
          • 移管可能性
  4. Impact of LC System Dispersion on the Size-Exclusion Chromatography Analysis of Monoclonal IgG Antibody Aggregates and Fragments: Selecting the Optimal Column Configuration for Your Method(『モノクローナル IgG 抗体の凝集体およびフラグメントのサイズ排除クロマトグラフィー分析における LC システム拡散の影響:分析法に最適なカラム構成を選択』)
    • このドキュメントでは以下について説明します。
      • SEC に基づいた mAb 分離における LC システム拡散の影響のトレーニング用および系統的なデモ。
      • 以下に基づいた最適な SEC カラム設定を選択するためのガイダンス:
        1. 使用する LC システム。
        2. 分析メソッドの要件には以下が含まれます。
          • 分離
          • 感度
          • 再現性
          • 移管可能性
      • ACQUITY UPLC H-Class Bio (UPLC) と ACQUITY Arc Bio (UHPLC) システムの SEC 分離性能の比較。

ビデオ:

水性移動相を毎日交換する必要はありますか? | Trust your Science 7

  • (微生物の増殖がどのようにして約 2 日でシステムを汚染し、クロマトグラフィーを中断するかに重点を置いています。)

カラムの攻撃による水性移動相の細菌の消滅 | Trust Your Science 18

  • 緑色レーザーがどのようにして移動相中の細菌の増殖を「見る」のに役立つかに重点を置いています。SEC カラムへの微生物汚染の影響を示します。

MaxPeak Premier カラム

BioResolve SEC mAb カラム:

ACQUITY UPLC BEH SEC および XBridge BEH SEC カラム:

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